Aspectos da infecção toxoplasmática no sistema reprodutor de ovinos (Ovis aries) machos experimentalmente infectados

Abstract

Oito reprodutores ovinos, isentos de Toxoplasma gondii e quaisquer outras doenças reprodutivas, foram distribuídos em três grupos para infecção com o respectivo protozoário: GI - três ovinos (2,0 x 105 oocistos da cepa P), GII - três ovinos (1,0 x 106 taquizoítos da cepa RH) e GIII - dois ovinos (controle). Parâmetros clínicos foram mensurados. Avaliações parasitêmicas e sorológicas (IFI) foram efetuadas. Qualidade espermática foi avaliada e a presença do parasito no sêmen foi investigada por meio das técnicas da bioprova e da PCR. Parasitismo tissular foi pesquisado pela bioprova, PCR e imunohistoquímica. Foi possível registrar alterações hipertermia e apatia nos ovinos infectados com oocistos de Toxoplasma gondii Parasitemia foi detectada em cinco ovinos. Todos os ovinos inoculados responderam ao estímulo antigênico, produzindo anticorpos contra T. gondii a partir do 5º dia pós-inoculação. Nos animais dos grupos I e II, os títulos observados foram de 1:4096 e 1:8192, respectivamente. Nos mesmos grupos, foram ainda, pela bioprova e PCR, constatada a presença do parasito no sêmen. Pela PCR detectou-se o DNA de T. gondii no sêmen dos animais 02 e 09 (do GI oocistos) e 07, 48 e 52 (do GII taquizoítos). Parasitismo tissular por T. gondii (bioprova e PCR) foi diagnosticada nos ovinos 09, 16 (oocistos) e 07 (taquizoítos). Vesícula seminal e próstata foram os tecidos de eleição da infecção por T. gondii (imunohistoquímica) no sistema reprodutor dos ovinos experimentalmente infectados. Em síntese, estes resultados sugerem a viabilidade da transmissão venérea deste coccídio.

Eight sheep reproducers exempt of Toxoplasma gondii and any other reproductive illnesses, were distributed in three groups for infection with the respective protozoan: GI - three sheep (2.0 x 105 oocysts from P lineage), GII - three sheep (1.0 x 106 taquizoites from RH lineage) and GIII - two sheep (control). Clinical parameters were measured. Parasitemics and sorologicals evaluations (IFA) were effected. Spermetic quality was evaluated and the presence of the parasite in the semen was searched through techniques of bioassay and PCR. Tissue parasitism was researched through bioassay, PCR and immuneistochemistry. It was possible to registered hyperthermia and apathy alterations in sheep infected with oocysts from Toxoplasma gondii. Parasitemia was detected in five sheep. All inoculated sheep responded to antigenic stimulation, producing antibodies against T. gondii upon the 5th day post-inoculation. In animals from groups I and II, the titles observed were 1:4096 and 1:8192, respectively. The animals of group III (control), did not present antibodies against T. gondii during all experimental period. In the same groups, it still has been evidenced, through bioassay and PCR, the presence of the parasite in the semen. Through PCR, T. gondii DNA was detected in the semen of animals 02, 09 of GI (oocysts) and 07, 48 and 52 of GII (taquizoites). Tissue parasitism by T. gondii (biotest and PCR) was diagnosed in sheep 09, 16 (oocysts) and 07 (taquizoites). Seminal vesicle and prostate were the tissues elected for infection with T. gondii (immuneistochemistry) in the experimentally infected sheep reproductive system. In summery, these results suggests the viability of the venereal transmission for this coccidium.